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产品名称:

荧光定量PCR

产品型号: 产品时间: 2023-07-05
荧光定量PCR采用聚合酶链反应(PCR )技术检测猪血清和组织中的PRV,适用于PRV的检测、诊断和流行病学调查

产品概述

  荧光定量PCR使用说明
  【试剂盒简介】
  猪伪狂犬病毒实时荧光PCR试剂盒,采用聚合酶链反应(PCR)技术检测猪血清和组织中的PRV,适用于PRV的检测、诊断和流行病学调查。
  【原理】
  提取DNA作为模板,在DNA聚合酶的作用下,经高温变性、低温退火和中温延伸的多次循环,使特异DNA片段的拷贝数放大数百万倍。将扩增的DNA片段进行电泳、染色后,在紫外灯下,肉眼可见DNA片段的扩增带。
  【试剂盒组份】

1. 裂解液8mL8. 阳性对照 
2. 蛋白酶K110μL9. 0.2 mL 薄壁PCR 管15个
3. 抽提液8mL10. PCR 反应液A180μL
4. 异丙醇7mL11. PCR 反应液B50μL
5. 洗涤液12mL12. 50 倍TAE 电泳缓冲液20mL
6. 无菌水500μL13. 染色液 
7. 阴性对照300μL 10μL

注:塑料袋内试剂(阳性对照、蛋白酶K、PCR反应液A和B)-20 ℃冻存,其他室温保存。

M1检测试剂盒(酶免)
三聚氰胺检测试剂盒(酶免)
磺胺二甲基嘧啶检测试剂盒(酶免)
孔雀石绿定量检测试剂盒(酶免)
金霉素定量检测试剂盒(酶免)

  
  【荧光定量PCR操作方法】
  一、病毒DNA的提取
  1.取出已处理的样品、阴性对照和阳性对照,分别加入600µL抽提液(用抽提液之前不要晃动,不要吸到上层保护液),用力颠倒10次混匀,12,000rpm离心10min。
  2.取500µL上清置于灭菌离心管中,加入500µL异丙醇,混匀,置液氮中3min或-70℃冰箱中30min。取出样品管,室温融化,13,000rpm离心15min。
  3.弃上清,沿管壁缓缓加入1mL洗涤液,轻轻旋转一周后倒掉,将离心管倒扣于吸水纸上1min,再将离心管真空抽干15min或37℃烘干。
  4.用30µL无菌水溶解沉淀,作为模板备用。
  二、样品制备
  1样品采集:病死或扑杀的猪,取大脑海马背侧皮层、中脑、脑桥、扁桃体、淋巴结等组织;待检活猪,用棉拭子取鼻腔分泌物,置于50%甘油生理盐水中,或用注射器取血5mL,2~8℃保存。(要求送检病料新鲜,严禁反复冻融。)
  2样品处理:
  2.1组织样品的处理:称取组织0.1g于研磨器中磨碎,再加1mL生理盐水继续磨至无块状物;然后将样品转至1.5mL灭菌离心管中,8000rpm离心5min,取上清100µL于1.5mL灭菌离心管中,加入500µL裂解液和10µL蛋白酶K,混匀后37℃温育1h。
  2.2全血样品的处理:待血凝后取血清放于离心管中,8000rpm离心5min,取上清100µL于1.5mL灭菌离心管中,加入500µL裂解液和10µL蛋白酶K,混匀后37℃温育1h。
  2.3阳性对照的处理:混匀后取100µL于1.5mL灭菌离心管中,加入500µL裂解液和10µL蛋白酶K,混匀后37℃温育1h。
  2.4阴性对照的处理:混匀后取100µL于1.5mL灭菌离心管中,加入500µL裂解液和10µL蛋白酶K,混匀后37℃温育1h。
  三、PCR
  1.反应体系:分别取16µLPCR反应液A(用前混匀)、2µLPCR反应液B(用前混匀)和2µL模板DNA,混匀。
  2.反应程序:在PCR仪上运行以下程序:94℃3min;94℃30s、55℃30s、72℃30s,35个循环;72℃延伸10min。
  四、电泳
  1.制胶:用50倍稀释的TAE电泳缓冲液配制1%琼脂糖凝胶。
  2.电泳:待胶凝固后,取5µLPCR扩增产物点样于琼脂糖凝胶孔中,以5V/cm的电压于50倍稀释的TAE电泳缓冲液中电泳。
  3.染色:取50倍稀释的TAE电泳缓冲液30mL,加入10µL染色液,混匀后将胶浸泡30min,于紫外灯下观察结果。
  【结果判断】
  阳性对照出现400bp扩增带,阴性对照无带出现(引物带除外)时,实验结果成立。被检样品出现400bp扩增带为猪伪狂犬病毒阳性,否则为阴性。
  【需用但未提供的材料】
  组织研磨器、眼科剪、眼科镊、一次性注射器、琼脂糖、灭菌1.5mL离心管和吸头(10µL、200µL、1000µL)。
  【猪伪狂犬病毒实时荧光PCR试剂盒注意事项】
  1.本试剂盒有效期为6个月,不要使用超过有效期限的试剂,试剂盒之间的组分不要混用。
  2.所有试剂应在规定的温度储存,使用时拿到室温下,使用后立即放回。

 

 

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